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TUhjnbcbe - 2021/3/22 2:17:00

亮点:

?开发了一种基于分子内FRET效应检测SIRT1活性的新型NIR荧光探针。

?这是第一个使用具有良好抗干扰效果的NIR发射来检测SIRT1的示例。

?该探针不仅可以在体外检测SIRT1,还可以在活细胞中原位成像SIRT1。

组蛋白脱乙酰基酶(HDACs)在许多细胞代谢中(例如染色体重组、基因表达和细胞稳态中)起着重要作用,HDACs的异常水平可能与多种生物现象有关,包括血管生成、细胞凋亡和神经退行性疾病,因此迫切需要理想的荧光团以检测组蛋白脱乙酰基酶(HDACs)的酶促活性。已报道的用于检测HDAC的一步式荧光探针的发射波长仅限于可见光区域。HDAC检测的传统设计策略是在HDAC存在的情况下,利用脱乙酰前后探针的分子内电荷转移(ICT)变化。然而,基于脱乙酰通过改变ICT效应来对近红外荧光团产生影响是很困难的。荧光共振能量转移(FRET)过程可以有效地将较短波长的发射转移到近红外区域,因此本文作者选择了一种分子内的荧光共振能量转移机制。

作者构建了一种近红外(NIR)荧光探针Lys-OBD(方案一),基于分子内FRET效应具有NIR发射,可用于检测sirtuin1(SIRT1)的活性,Sirtuin1(SIRT1)是最重要的HDAC之一。Lys-OBD包含一个非发射性O-芳基NBD基团(OBD)和一个近红外发射Cy5荧光团。与SIRT1反应后,Lys-OBD中的非荧光OBD通过脱乙酰基反应,进行主链重排,将其改变为绿色发光硝基苯并恶二唑(NBD)。因此发生了在能量供体NBD和能量受体Cy5之间的分子内FRET,并且可以检测到Cy5的NIR发射。作者首先通过光谱研究和量子分子计算确定,由于NBD的发射和Cy5的吸收重叠,Lys-NBD的Cy5和NBD之间会发生荧光反应过程。对优化结构的Lys-NBD模型进行量子力学计算。作者利用密度泛函数理论对Lys-NBD构像进行优化。从计算结果可以看出,Lys-NBD与Cy5的最近距离为3.00?,表明供体和受体之间的分子内相互作用,折叠形式是最理想的构象。供体和受体之间的短距离(小于10?)保证了FRET的效率。

Lys-NBD在生理pH环境下稳定,作者测量了在SIRT1抑制剂EX存在和不存在的情况下,该探针在含SIRT1的水缓冲液中的吸收和荧光光谱。探针在nm和nm处分别显示了O-NBD和花菁染料的两个吸收带(图1A)。用SIRT1浸泡2小时后,在nm处出现了新的吸收峰,这是由新生成的NBD基团产生的(图1A),而在nm处的吸收没有变化。同时,在0.1和0.2μMSIRT1中,探针在nm处的近红外荧光强度显著提高了5.3倍和6.7倍,说明该探针可以基于分子内的FRET效应检测到SIRT1的近红外荧光信号变化。在添加SIRT1之前,用抑制剂EX预处理Lys-OBD时,近红外荧光强度几乎没有变化(图1B)。实验结果表明Cy5信号的增加是由酶活性而不是其他因素介导的。

为了确定酶反应的产物,采用反相高效液相色谱法对Lys-OBD进行酯交换分析(图2).HPLC结果显示,探针的初始保留时间为11.9min,随着孵育时间的延长,探针出现了一个新的峰,保留时间为11.2min。通过高分辨电喷雾电离-质谱(ESI-MS)在11.2min进一步分析新产品,作者确认了分子内迁移产品Lys-NBD。

作者研究了SIRT1的酶促反应动力学,并计算了一级速率常数k。荧光光谱显示,用SIRT1处理Lys-OBD后,近红外发射明显增强(图3A)。在分钟内不同时间点测定了nm处的荧光强度。通过将荧光数据拟合成指数方程,SIRT1的一级速率常数k为0.min-1(图3B)。为了研究Lys-OBD对SIRT1的检测限,作者在酶促反应中使用了不同浓度的SIRT1(图3C)。结果证实,酶效应显著放大的近红外荧光强度与SIRT1的量相关。同时nm处的荧光强度与nm以下的酶浓度呈良好的线性关系(图3D),证实Lys-OBD可以准确测量SIRT1浓度。确定相应的SIRT1检出限为4.76nM。

然后作者继续检查Lys-OBD的适用性,以评估SIRT1抑制剂的抑制效果。图4实验结果表明探针可以用来研究抑制剂的活性和筛选潜在的抑制剂。考虑到O-NBD的活性,作者主要研究了正常浓度下不同胺和蛋白质之间的差异。荧光光谱显示,在nm处,这些胺和蛋白的荧光强度几乎没有变化,而只有在SIRT1存在的情况下,荧光强度才显著增加。(图5),实验结果表明,根据FRET过程的近红外信号结果,Lys-OBD可以明显降低高浓度氨基酸的干扰,该探针有可能用于SIRT1高表达细胞模型的成像。作者还研究了该探针在金属离子,离子和活性氧等无机物质存在下的选择性,nm荧光信号与这些物质无明显变化。细胞*性实验表明Lys-OBD具有应用于生物学的潜力。随后作者评估了探针成像活细胞中SIRT1活性的能力,图6实验结果表明该探针可以与SIRT1相互作用,并在活细胞中可视化酶活性。本文作者通过FRET机制进一步减少SIRT1检测过程中生物系统中丰富的高浓度氨基酸的干扰。所以该探针不仅可以在体外检测SIRT1,而且还可以实现首次在具有NIR荧光的高表达SIRT1的活细胞中成像SIRT1。

DOI:10./j.snb..

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